作者：金艷 陳敏 金振曉 鄭奇軍 王新利 趙? 崔勤 單位：第四軍醫大學西京醫院

體外循環的建立經胸骨正中入路，切開皮膚及皮下組織，剪開胸骨，充分暴露心臟及大血管組織，靜脈給予普通肝素(3mg/kg)，進行肝素化［激活凝血時間(ACT)大于400s］，在主動脈根部做荷包后行主動脈插管(14Fr，科威)，同樣于右心耳及下腔靜脈插管(16Fr，科威)，充分排氣后經CPB管道(科威)與CPB機(Sarns7400，美國)、變溫水箱(Sarns)及膜式氧合器(小型，科威)相連。用平衡鹽液以20～25ml/kg進行預充，灌注流量為80～120ml/(min•kg)，維持靜脈血氧飽和度(SvO2)＞65%，灌注壓維持在50～80mmHg(1mmHg=0.133kPa)。模擬臨床完成CPB模型建立。CPB建立后，逐步進行全身降溫，溫度降到30℃左右時阻斷升主動脈，并用針頭插入主動脈根部，灌注心臟冷氧合全血停搏液(15ml/kg)［2］使心電活動消失，同時停止機械通氣，阻閉30min后開放升主動脈、全身復溫，復溫至34～35℃，心臟內排氣，有室顫情況發生時立即使用電除顫復律，同時恢復機械通氣，調整酸堿度和電解質情況，于30min后逐漸撤離CPB，拔除靜脈插管及主動脈插管。

監測指標研究中監測麻醉誘導后即刻(基礎值，T0)、CPB前即刻(T1)、開始復溫后5min(T2)、停CPB即刻(T3)及停CPB后60min(T4)5個時間點的平均動脈壓(mAP)、心率(HR)及動脈血氧飽和度(SaO2)、SvO2、血細胞比容(hematocrit，Hct)及血乳酸(Lac)水平。

圍CPB期血流動力學狀況所有實驗豬在麻醉后至CPB前均維持良好血流動力學狀況(見圖1)，其中4只在復跳后給予小劑量腎上腺素復蘇，而后保持良好血壓及心率。n=12。與基礎值比較，bP＜0.01。

圍CPB期內環境變化術前至轉流過程中SaO2一直維持在100%;SvO2在阻閉升主動脈后開始下降，到開放升主動脈時達最低點;Hct在轉機后呈中度稀釋，血Lac水平在CPB后逐步上升(見圖2)。2．3心臟復跳情況實驗豬8只(67%)在開放升主動脈后心臟自動復跳，4只(33%)行電除顫后復律。

SaO2、SvO2和Lac是反映氧供的重要指標。實驗中SaO2一直處于良好飽和狀態，提示氧合器功能良好;SvO2在轉機后有所下降，但無統計學差異及臨床意義。Lac是組織灌注的敏感指標，影響Lac的因素較多，如血液稀釋、體溫下降、血管收縮等，通常在CPB后出現明顯上升，在CPB結束時達峰值，術后12h后緩慢下降。實驗豬術中灌注壓相對恒定，Lac上升考慮主要與CPB中的血液稀釋、中低溫以及低體溫所導致的血管收縮有關，與臨床情況也比較相符［3～6］。盡管實驗豬在圍CPB后出現顯著HR及mBP變化，但是符合CPB后變化規律，其中4只豬應用微小劑量腎上腺素靜脈泵入后mBP在停機前恢復到術前水平，保證順利脫機。

由于豬和人在解剖學、生理學上有極大的相似性［7］，國內外在做大動物實驗時多應用豬更具參考價值，如建立各種大動物模型或進行藥物及其它實驗等。但小型豬在解剖學上又有它的特點，因此，在建立此類動物模型上還應注意以下問題。麻醉給藥途徑①由于小型豬皮下脂肪較厚，因此在麻醉誘導時不宜選肌肉注射作為給藥途徑，以防肌肉注射不到位，麻醉無效，而被動追加過多麻醉劑，最終導致麻醉藥物蓄積過量;②經外周靜脈給藥時不宜選用對血管刺激性較強的藥物，以免因強烈刺激產生疼痛，使小型豬不能耐受注射，引起不必要的麻煩;③小型豬性格較溫順，在沒有麻醉前，接觸它的動作宜輕柔，不宜“壓麻”，可選擇耳緣靜脈穿刺麻醉，此時僅需暴露出耳廓，輕柔消毒、穿刺、置管，小型豬對上述動作均能夠耐受。

氣管插管方式小型豬聲門非常低，而且開口的程度不如犬類大，因此氣管插管時，喉鏡宜選用最長鏡片，必要時還可用環鉗輕輕牽拉舌頭幫助聲門暴露，在氣管插管完成前，切忌使用肌肉松弛劑。CPB插管方法小型豬胸升主動脈位置較深，升主動脈置管時，容易成角，主動脈插管宜選用14F管道，以保證足夠灌注血流，心包內下腔靜脈顯露及長度受限，而膈上至心包外段的下腔靜脈較長，相對容易暴露，因此在行CPB插管時，宜在心包內進行，阻閉時上腔靜脈及主動脈插管在用常規位置，而阻閉下腔靜脈應選在心包外進行。CPB過程中的Hct控制體外循環過程中需要一定程度血液稀釋［7］，一般要求Hct在23%～25%，過高可能導致微循環灌注不足，過低又可能造成血紅蛋白攜氧能力不足。小型豬血容量比如同嬰幼兒，較成年豬大［7］，稀釋過程中Hct控制較難，用晶體液按20～50ml/kg中小劑量進行預充，Hct基本上可滿足生理需求，這時心臟冷停跳液的成分對Hct影響就顯得非常大，本實驗采用全血冷灌方式，在最大程度上減輕了血液稀釋，減小對超濾的需要，有益于CPB后心臟復跳。

減少術中出血在建立CPB時還需注意游離組織時應注意盡可能減輕損傷，減少出血，必要時可應用電刀或電凝止血，保持切口干燥，由于實驗豬的胸膜較薄，在建立CPB時可能傷及，CPB過程中的血液有可能下漏入胸膜腔中，若發現CPB模式氧合器血平面難以維持，應警惕有血液進入胸腔的可能，需及時吸出胸腔內存血;一方面有益于CPB的正常進行，另一方面保持一定水平的Hct，Hct過低可導致血紅蛋白攜氧能力差，導致乳酸水平升高。

綜上所述，小劑量麻醉誘導、中小劑量預充與全血冷灌法建立的小型豬體外循環模型，循環穩定、血液稀釋輕、干擾因素少、復跳順利，可以為CPB條件下開展研究提供合適的動物模型。