材料與方法

1.材料

本試驗中以花楸成熟種胚為外植體，種子采于黑龍江植物園的花楸成熟果實，調制后在4℃冰箱中貯存。將材料用自來水浸泡18h，然后用70%的酒精浸泡30s，再用2%的NaClO溶液攪拌消毒處理10min，然后在無菌工作臺上用無菌水沖洗5～7次，再用解剖刀切破種皮子葉端，剝出成熟胚待接種之用。

2.方法

1)不定芽的誘導：把成熟胚接種在附加了不同濃度的6-BA（6-芐基氨基嘌呤）、NAA（萘乙酸）的MS和WPM固體培養基上。每組激素組合接種6瓶，每瓶接種5個種胚。觀察不定芽生長狀況，并在第20天開始統計不定芽誘導率。根據不定芽誘導率，選擇最佳培養基與激素組合。2)不定芽的增殖：觀察不定芽生長狀況，當不定芽生長0.5cm時轉接到附加了不同質量濃度的6-BA、IAA激素的MS增殖培養基上進行培養。3)不定芽的生根：將增殖到長度1.0～1.5cm的不定芽接種到附加了不同質量濃度的IBA或NAA的1/2MS培養基上，進行生根培養。4)培養條件：采用日光燈照射進行光照培養，光照16h，黑暗8h，光強2000～3000lx，溫度(25±1)℃，濕度70%～80%。5)數據統計：通過統計不定芽和生根的數量，分別計算出不定芽誘導率和生根率。不定芽誘導率＝（誘導出不定芽外植體數/接種的外植體總數）×100%；生根率＝（生根不定芽數/接入不定芽總數）×100%。

結果與分析

1.不同處理對花楸種胚不定芽誘導的影響

1)不同基本培養基對花楸種胚不定芽誘導的影響：將接種在MS和WPM培養基上的花楸成熟種胚培養7d后，胚芽膨大，3周后部分成熟胚胚芽處出現不定芽。1個月后，不同培養基中花楸成熟胚不定芽誘導率出現差異，誘導不定芽3周后統計誘導情況。在MS培養基中，不定芽誘導率為80.33%；在WPM培養基中，不定芽誘導率為60.00%。經過X2分析得出，MS和WPM培養基上產生的不定芽誘導率之間有顯著差異，即η＝4.02＞Xα＝3.84。結果指出MS培養基對不定芽的誘導效果優于WPM培養基。

2)不同激素質量濃度組合對花楸種胚不定芽誘導的影響：通過對激素質量濃度組合篩選，本試驗中選擇了不同質量濃度的6-BA、NAA組合研究其對不定芽誘導的影響。將花楸成熟種胚培養12d后，觀察到生長很好的嫩綠不定芽，3周后部分不定芽長到1～2cm。1個月后，不同激素質量濃度組合處理中花楸成熟胚不定芽的誘導率出現差異。由表2可以看出，在附加NAA0.5mg/L和6-BA0.5mg/L的MS培養基中，不定芽誘導率最高達80.33%，經過X2分析得出，激素質量濃度組合5與組合1、3、4、6、7、9之間芽誘導率均有顯著差異（X0.05=3.84），即η1-5=7.50＞X0.05、η3-5=6.20＞X0.05、η4-5=5.08＞X0.05、η5-6=6.20＞X0.05、η5-7=10.33＞X0.05、η5-9=5.08＞X0.05，而其它各組合之間的芽誘導率無顯著差異。在附加NAA1.0mg/L和6-BA0.5mg/L的WPM培養基中，誘導率最高為60.00%，經過X2分析得出，激素質量濃度組合6與組合1、2、8、9，組合2與組合7之間芽誘導率均有顯著差異，即η1-6=5.45＞X0.05、η2-6=4.29＞X0.05、η5-8=4.29＞X0.05、η5-9=6.78＞X0.05，而其它各組合之間芽誘導率無顯著差異。

2.不同激素質量濃度組合對花楸種胚不定芽增殖的影響

經初代培養誘導不定芽，把不定芽轉接到附加了不同質量濃度的6-BA、IAA的MS增殖培養基上進行培養，經過2周可進一步誘導增殖出5～13個不定芽，與初代培養誘導不定芽的情形相似。培養中，如激素6-BA質量濃度過高會出現玻璃化現象，在后期抑制根的生長。不同激素質量濃度組合對不定芽增殖的影響見表3。從表3可以看出，不定芽增殖的最佳激素組合和質量濃度為IAA0.5mg/L＋6-BA0.2mg/L。

3.不同質量濃度的激素對花楸種胚不定芽生根的影響

待不定芽高1.0～1.5cm時，從基部剪下，移至生根培養基中，5d后芽基部陸續出現白色突起或愈傷組織，10～15d后可見發達的白色、黃綠色或紅色主根，1個月后大量須根產生，并形成發達的根系。激素IBA質量濃度對生根數量的影響如表4所示。在1/2MS培養基中，IBA質量濃度為0.2mg/L，根數量最大，不定根誘導率為70%，根長隨著IBA質量濃度的逐漸增高而漸漸變短，當IBA質量濃度為0.2～0.3mg/L時，根長差別不大，然后根長逐漸變大，從根的生長狀態來看，添加IBA的處理中根粗壯，須根多，移栽容易成活。激素NAA質量濃度對生根數量的影響如表4所示。在1/2MS培養基中，NAA質量濃度為0.3mg/L，生根數量最大，不定根誘導率為50%，隨著NAA質量濃度的逐漸變大，根的數量先增多后減少，當NAA質量濃度為0.2～0.3mg/L時，根長差別不大，然后根長逐漸變大，須根多，移栽容易成活。經過X2分析得出，處理6與處理2、4、5、8，處理3與1之間的不定根誘導率有顯著差異，即η6-2=η6-5=η6-8=5.05＞X0.05、η6-4=7.5＞X0.05、η3-1=6.67＞X0.05，而其它處理間不定根誘導率無顯著差異。

結論與討論

（1）愈傷組織和不定芽誘導：建立高頻再生體系的基礎和關鍵技術環節是愈傷組織和不定芽的誘導。高質量的誘導組織是進一步誘導分化和生根的前提和基礎[7-8]。本研究中得出，誘導花楸成熟種胚產生不定芽的適宜培養基為MS＋6-BA0.5mg/L＋NAA0.5mg/L＋蔗糖30g/L＋瓊脂6g/L，WPM＋6-BA0.5mg/L＋NAA1.0mg/L＋蔗糖30g/L＋瓊脂6g/L，其成熟種胚不定芽誘導率分別為80.33%、60.00%。MS培養基的成熟種胚不定芽誘導率比WPM培養基的誘導率高，誘導出的愈傷組織和不定芽質量高，具有較大的繁殖潛力。誘導不定芽增殖的最適培養基為MS＋6-BA0.2mg/L＋IAA0.5mg/L＋蔗糖30g/L＋瓊脂6g/L，可誘導增殖出5～13個不定芽。

（2）生根培養：通過生根培養中激素種類和濃度的對比試驗得出，生根培養效果最好的培養基是1/2MS＋IBA0.2mg/L＋蔗糖30g/L＋瓊脂6g/L，成熟種胚不定芽生根率為70%。當培養基是1/2MS＋NAA0.2mg/L＋蔗糖30g/L＋瓊脂6g/L時，成熟種胚不定芽生根率為50%。在生根培養試驗過程中發現，隨著IBA或NAA質量濃度的增加，根變粗。可能是因為當IBA或NAA達到一定的質量濃度后會抑制根的伸長生長，刺激根的增粗生長，增加根系的吸收面積，這有利于移栽成活率的提高。但是當IBA或NAA的質量濃度高于0.3mg/L時，根出現肉質化，說明較高質量濃度的IBA或NAA對生根有毒害作用，影響生根質量，造成畸形根的形成，從而阻礙不定根的生長。所以IBA或NAA的質量濃度對于不定根的生長發育具有較大的影響。及時轉瓶是誘導花楸生根培養過程中值得注意的問題。當培養出不定芽翠綠發亮、根粗壯、根須發達的植株時，必須及時轉瓶到新鮮的培養基中培養，否則將影響植株的生長。一些研究指出，可能是因為外植體在初代培養的過程中，由于本身的生物學特性和培養條件的影響，機體會分泌一些有毒的物質，如果不及時轉瓶，滲透到培養基中的有害物質會影響培養物的生長和分化；這種狀況也可能是由于生長素在增殖培養基中殘留作用的影響。其原因有待進一步深入研究。（本文圖、表略）

本文作者：包文泉 鄒薇薇 朝洛蒙 白玉娥 田有亮 何炎紅 單位：內蒙古農業大學林學院 赤峰天虹花卉市場